這種帶有中央腔室和側翼微通道的器官芯片可以創(chuàng )建模仿肺部結構的氣液界面模型。被內皮細胞制成的脈管?chē)@的肺上皮細胞功能化的微流控芯片,可以重現典型的體內氣液界面。
SynVivo的SynALI是一種新的氣液界面模型(氣液界面微加工的多孔結構纖毛氣道細胞 - ALI),模仿了肺部的結構。該微流控芯片是光學(xué)透明的,被上皮細胞功能化,該上皮細胞被由內皮細胞組成的血管系統圍繞。這種結構保持了通過(guò)氣道細胞的空氣流體(ALI),從而形成了運輸粘液的呼吸管:這是粘膜纖毛清除的現象。
借助這種完全創(chuàng )新的微流控芯片,您可以實(shí)時(shí)觀(guān)察和量化許多參數,例如細胞的形態(tài),氣道的結構,細胞之間的相互作用以及氣道的不同功能(黏液運輸,ciliary beating)和治療改善。
● 現實(shí)的氣道結構和環(huán)境
● 體內血液動(dòng)力學(xué)切應力
● 實(shí)時(shí)可視化細胞和屏障功能,包括黏液,ciliary beating,免疫細胞相互作用和治療性篩選。
● 穩健易用的協(xié)議
要進(jìn)行SynALI實(shí)驗,有兩種套裝規格可用(套裝不包括建立氣液界面所需的驅動(dòng)泵):
起始套裝
● 10個(gè)SynALI芯片-IMN2線(xiàn)性(3μm狹縫)
● 配件包含導管,夾具,針頭和注射器
● 氣動(dòng)啟動(dòng)裝置(用于導管以去除空氣)
實(shí)驗套裝
● 10個(gè)SynALI芯片-IMN2線(xiàn)性(3μm狹縫)
● 配件包含導管,夾具,針頭和注射器
如果您只想用芯片的話(huà),可以單獨訂購芯片。
規格參數
IMN2線(xiàn)性芯片
● 外通道寬度:200μm
● 中央通道寬度:500μm
● 深度:100μm
● 形程寬度:50μm
● 孔徑:3μm
應用
氣道模型可以通過(guò)內皮和上皮細胞的共培養來(lái)創(chuàng )建,肺泡三培養模型可以同時(shí)使用內皮、上皮和成纖維細胞。
提供氣液界面模型技術(shù)手冊,請聯(lián)系我們索要。
已經(jīng)開(kāi)發(fā)出來(lái)的這些共培養協(xié)議可建立與3D肺組織連通的真正的血管單層。在這些器件中生長(cháng)的人類(lèi)細胞保留了與真實(shí)組織中相似的生物學(xué)表型。領(lǐng)先的研究人員已經(jīng)證實(shí),與使用常規培養技術(shù)培養的細胞相比,這些芯片中生長(cháng)的細胞能更準確地反應體內發(fā)現的細胞行為。
與在靜態(tài)條件下進(jìn)行的孔板測試不同,這些芯片可再現用于評估細胞-藥物和細胞-細胞相互作用的現實(shí)動(dòng)態(tài)條件,從而為研究和闡明成功與失敗的機制提供準確的體外平臺。與體內動(dòng)物研究相比,它們可以在受控環(huán)境中進(jìn)行實(shí)驗的實(shí)時(shí)可視化和分析。
外通道之一中的融合內皮細胞播種密度的示例
播種后立即具有肺上皮細胞的微流控器件的示例
Mucus formation and biomarker staining: A) - C) Confluent co-culture of endothelial and epithelial cells; mucus formation and staining of biomarkers in epithelial cells. D) and E) Biomarker staining for tight junction markers (VE-Cadherin and ZO-1) in endothelial cells.
出版文獻
Liu Z. et al., Co-cultured microfluidic model of the airway optimized for microscopy and micro-optical coherence tomography imaging, Biomedical Optics Express 2019 (Download)
(a) The ALI device to develop the air-liquid interface across the cells. The air (or epithelial) channel is separated from two fluid (basolateral) channels by pores. Right panel shows conceptual drawing of the proposed orientation of the cells when seen from top (above) and a cross-section (below). (b) Bright Field image of the fabricated device without cells and the magnified view showing the pores. (c) Fabricated device bonded to the glass coverslip with inserted tubing for perfusion.
(a-c). Phase contrast imaging of HBE cells in the center channel: (a) Directly after seeding, (b) attachment of cells after 24 hours, and (c) 100% confluence after 7 days of culture. (d) Live/dead staining. (e) Cross-sectional view of 3-D reconstructed confocal image (10X mag.). Cell culture is co-stained with Plasma Membrane Orange and Calcein Green. (f). En face of Fig. 3(e).